调环酸钙（prohexadione-calcium，Pro-Ca）是一种抑制赤霉素生物合成的新型植物生长调节剂，其化学名称为3，5-二氧代-4-丙酰基环己烷羧酸钙，与多效唑及烯效唑等三唑类延缓剂相比，作物残留倾向低，对环境无污染，毒理学和生态毒理学特征优势明显，应用前景好，有可能取代三唑类生长延缓剂[11-12]。已有研究[13]表明，外源施加Pro-Ca可减少冷害下番茄果实的丙二醛（MDA）含量，降低磷脂酶D（PLD）和脂氧合酶（LOX）活性，并增加脯氨酸（Pro）含量来保持细胞膜的完整性，从而减轻冷害对番茄果实造成的损伤。暴露于干旱环境下的禾草经过LOX处理后降低了电解质渗漏和MDA含量，并显著提高超氧化物歧化酶（SOD）、抗坏血酸过氧化物酶（APX）及过氧化氢酶（CAT）活性，增强植物对干旱的耐受性[14]。Pro-Ca也可减轻盐分对豆类幼苗的有害影响，研究[15]显示，Pro-Ca可以通过增加光合色素、总碳水化合物、总可溶性糖、Pro含量和抗氧化酶活性来提高蚕豆幼苗在盐胁迫下的耐受性。目前，人们对Pro-Ca在植物生长、发育和胁迫方面有了更加深入的研究，但对盐碱胁迫下的研究和应用还十分有限，尤其是对调控盐碱胁迫下的绿豆生理响应还鲜见报道。为此，本研究以盐碱抗性绿豆品种（绿丰2号，幼苗盐害指数<20）和盐碱敏感性绿豆品种（绿丰5号，60≤幼苗盐害指数<80）为试验材料，探讨不同浓度Pro-Ca对绿豆幼苗在盐碱胁迫下的调控作用，为深入揭示Pro-Ca抗盐碱胁迫作用及在农业生产中深入应用提供试验基础和依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
绿丰2号和绿丰5号均由国家杂粮工程技术研究中心提供，植物生长调节剂调环酸钙（Pro-Ca，5%）由四川国光农化股份有限公司提供。
1.2 试验设计
1.2.1 播种与幼苗培养
选取籽粒饱满、形状均一致的绿豆种子，经75%乙醇消毒后用无菌水冲洗3次，以蛭石为栽培基质在塑料盒（37cm×29cm× 11cm）中种植，每盒均播种30粒，出苗后定苗15株。于2019年在黑龙江八一农垦大学农学院温室中进行培养，昼/夜空气温度为23°C~28°C/20°C~ 25°C，光照强度为18 000lx。播种时每盆加入1.5L蒸馏水，自真叶长出时开始每3d补充1/2 Hoagland营养液0.5L。
1.2.2 盐碱胁迫处理
当幼苗长至复叶展开期，选取长势基本一致的绿豆幼苗同时进行盐碱胁迫及调节剂处理。其中盐碱胁迫以模拟典型盐碱土的实际情况进行，即使用混合盐碱溶液（NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3=1:9:9:1，pH=8.5±0.1）浓度为150mmol/L[16]。各处理及对照均透灌1.5L的盐碱溶液进行胁迫处理，处理3d后再补充0.5L盐碱溶液。
1.2.3 外源Pro-Ca处理
于盐碱胁迫处理的同时进行Pro-Ca调节剂处理，分别设置50、100、150、200mg/L 4个浓度梯度，以蒸馏水为对照（CK），从上向下每盒均匀喷施50mL（叶面形成一层水膜），每个处理均设置2盒。盐碱胁迫15d后，各处理均随机选取3株，用于生长参数和相对叶绿素含量（SPAD）的测定，试验设置4次重复。以第1片完全展开的复叶为研究对象，另随机选取3株植株叶片混合，取样后用液氮速冻立即置于-80℃低温冰箱中保存，用于各项生理指标测定，试验设置3次重复。
1.3 测定项目与方法
1.3.1 生长参数及生物量
分离地上和地下部分，测量株高、茎粗、地上干重和地下干重，并计算根冠比（R/S），R/S=根干重/地上部干重。
1.3.2 SPAD
以第1片完全展开的复叶为研究对象，采用便携式叶绿素仪（日本）测定SPAD。
1.3.3 渗透物质含量
取样后利用蒽酮比色法、磺基水杨酸法和考马斯亮蓝G-250染色法分别测定可溶性糖、Pro及可溶性蛋白质含量。
1.3.4 保护性酶活性及MDA含量
取样后分别用氮蓝四唑（NBT）法、愈创木酚法、紫外吸收法和硫代巴比妥酸（TBA）法测定SOD、POD、CAT活性及MDA含量。
1.4 数据处理
利用Microsoft Excel统计数据与绘图，SPSS 22.0软件进行ANOVA单因素方差分析，Duncanʼs进行不同处理间的比较检验，同时使用双因素方差分析测试喷施Pro-Ca与品种类型对盐碱胁迫交互作用的主要影响。
2 结果与分析
2.1 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期形态指标影响
由表1可知，不同浓度Pro-Ca处理下的绿丰2号株高与CK处理相比分别降低了25.02%、29.64%、32.85%和18.90%，且均与CK处理差异达显著水平；而绿丰5号分别较CK处理降低了0.06%、21.72%、0.08%和10.32%，且在100mg/L处理下株高较CK处理降低达显著水平。由此可见，Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期的株高均有不同程度的降低效果。绿丰2号茎粗与CK处理相比无明显改变，而绿丰5号茎粗则随Pro-Ca处理浓度的增加呈先增加后降低的趋势，在100mg/L处理下达最大值，较CK处理增加了13.33%，说明Pro-Ca对盐碱胁迫下绿丰5号的茎粗有一定程度的增加效果。Pro-Ca对盐碱胁迫下苗期绿豆的干物质积累量均有不同程度的促进作用，绿丰2号和绿丰5号的地上部干重均有不同程度的增加，但各组间与CK处理相比无显著差异，说明Pro-Ca对盐碱胁迫下绿丰2号与绿丰5号的地上部干重影响较小。绿丰2号在不同浓度Pro-Ca处理下地下部干重与CK处理相比各组间均呈显著增加水平，绿丰5号随Pro-Ca浓度的增加则呈先增加后降低的趋势，且在100mg/L处理下达显著差异水平。根冠比表现为绿丰2号受Pro-Ca影响较大，与CK处理相比分别增加了57.14%、42.86%、28.57%和50.00%，50mg/L处理达显著水平。绿丰5号在100mg/L Pro-Ca处理下根冠比虽然增加，但与CK处理相比差异不显著，说明Pro-Ca可以增加绿豆在盐碱胁迫下的根冠比，且对绿丰2号影响较为显著。双因素分析表明，Pro-Ca对盐碱胁迫下绿丰2号和绿丰5号的株高、地下部干重和根冠比均有极显著或显著的影响，且对绿丰5号茎粗的影响大于绿丰2号。
表1 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期形态指标的影响
Table 1
| 处理浓度 Treatment concentration (mg/L) | 品种 Variety | 株高 Plant height (cm) | 茎粗 Stem diameter (mm) | 地上部干重 Shoot dry weight (g) | 地下部干重 Root dry weight (g) | 根冠比 R/S |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 0 (CK) | 绿丰2号 | 20.58±2.12a | 1.43±0.19a | 0.20±0.05a | 0.03±0.01c | 0.14±0.07b |
| 绿丰5号 | 20.44±3.10a | 1.43±0.19b | 0.23±0.08a | 0.04±0.02b | 0.24±0.22a | |
| 50 | 绿丰2号 | 15.43±1.65bc | 1.45±0.33a | 0.24±0.10a | 0.05±0.01ab | 0.22±0.10a |
| 绿丰5号 | 19.18±2.12a | 1.55±0.24ab | 0.25±0.10a | 0.04±0.02b | 0.17±0.08ab | |
| 100 | 绿丰2号 | 14.48±1.67c | 1.43±0.26a | 0.23±0.10a | 0.04±0.02b | 0.20±0.09ab |
| 绿丰5号 | 16.00±1.49b | 1.65±0.26a | 0.28±0.08a | 0.08±0.08a | 0.26±0.17a | |
| 150 | 绿丰2号 | 13.82±2.64c | 1.43±0.18a | 0.24±0.09a | 0.04±0.02bc | 0.18±0.09ab |
| 绿丰5号 | 18.77±3.17a | 1.58±0.15ab | 0.25±0.07a | 0.03±0.01b | 0.12±0.05b | |
| 200 | 绿丰2号 | 16.69±1.96b | 1.38±0.18a | 0.28±0.11a | 0.05±0.01a | 0.21±0.10a |
| 绿丰5号 | 18.33±2.60a | 1.48±0.24ab | 0.29±0.14a | 0.04±0.01b | 0.17±0.09ab | |
| F值F-value | 处理 | 10.912** | 0.892 | 1.629 | 4.480** | 2.720* |
| 品种 | 19.301** | 5.314* | 2.086 | 1.937 | 0.017 | |
| 处理×品种 | 2.823* | 0.539 | 0.191 | 4.058* | 2.944* |
同列数据不同小写字母表示差异显著（P < 0.05），“**”表示差异极显著（P < 0.01），“*”表示差异显著（P < 0.05）。下同
Different lowercase letters in the same column indicate significant difference at 0.05 level, “**”indicates extremely significant difference at 0.01 level, “*”indicates significant difference at 0.05 level. The same below
2.2 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期SPAD的影响
如图1所示，不同浓度Pro-Ca均一定程度地提高了绿丰2号和绿丰5号SPAD。随着Pro-Ca浓度的增加，绿丰2号SPAD与CK处理相比分别增加了14.88%、15.77%、14.88%和14.58%，而绿丰5号分别增加了7.86%、18.55%、10.69%和12.58%，且绿丰2号和绿丰5号的SPAD都在100mg/L Pro- Ca处理下达到峰值，但差异并未达显著水平。
图1
图1
Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期SPAD的影响
相同小写字母表示处理间无显著差异（P > 0.05）
Fig.1
Effects of Pro-Ca on SPAD of mung bean seedlings under salt-alkali stress
The same letters indicate no significant difference with treatment (P > 0.05)
2.3 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期渗透调节物质含量的影响
2.3.1 Pro-Ca对可溶性糖含量的影响
由表2可知，绿丰2号和绿丰5号叶片可溶性糖含量随着Pro-Ca浓度的增加呈先升后降的趋势，分别在150和100mg/L浓度下叶片可溶性糖含量最高，与其对照相比含量均增加了约2倍，当绿丰2号和绿丰5号分别用超过150和100mg/L浓度处理时，叶片可溶性糖含量逐渐降低。说明外源施加Pro-Ca可增加盐碱胁迫下绿豆苗期可溶性糖含量，从而缓解盐碱胁迫对绿豆造成的损伤。
表2 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期渗透调节物质含量的影响
Table 2
| 处理浓度 Treatment concentration (mg/L) | 品种 Variety | 可溶性糖含量 Soluble sugar content (m/g FW) | 可溶性蛋白质含量 Soluble protein content (m/g FW) | 脯氨酸含量 Proline content (μg/g FW) |
|---|---|---|---|---|
| 0(CK) | 绿丰2号 | 3.89±0.17a | 4.44±0.02a | 18.58±5.62a |
| 绿丰5号 | 2.62±0.29a | 4.18±0.17b | 12.62±2.25a | |
| 50 | 绿丰2号 | 7.42±0.23bc | 6.37±0.12a | 21.94±1.92a |
| 绿丰5号 | 4.49±0.20a | 5.63±0.14ab | 15.31±3.58a | |
| 100 | 绿丰2号 | 10.63±0.34c | 4.63±0.19a | 35.68±2.25a |
| 绿丰5号 | 10.10±0.42b | 6.43±0.12a | 36.25±6.80a | |
| 150 | 绿丰2号 | 11.80±0.46c | 4.94±0.09a | 40.67±1.16a |
| 绿丰5号 | 9.27±0.26a | 4.93±0.05ab | 36.25±1.73a | |
| 200 | 绿丰2号 | 9.62±0.28b | 5.65±0.17a | 21.94±3.66a |
| 绿丰5号 | 9.09±0.10a | 4.72±0.05ab | 31.74±4.56a | |
| F值F-value | 处理 | 702.983** | 156.345** | 43.608** |
| 品种 | 211.231** | 0.346 | 2.836 | |
| 处理×品种 | 21.760** | 114.639** | 2.501 |
2.3.2 Pro-Ca对可溶性蛋白含量的影响
由表2可知，在盐碱胁迫下，2个绿豆品种在不同浓度Pro-Ca处理下均可增加叶片可溶性蛋白含量。绿丰2号和绿丰5号分别在50和100mg/L的Pro-Ca处理下达到最大值，与其对照相比分别增加了43.47%和53.83%，随后逐渐降低。说明在盐碱胁迫下Pro-Ca对绿豆苗期可溶性蛋白含量调控的最适浓度分别为50和100mg/L。
2.3.3 Pro-Ca对Pro含量的影响
由表2可知，在盐碱胁迫下，绿丰2号和绿丰5号叶片的Pro含量随着Pro-Ca浓度的增加呈先升高后降低的趋势，且在100和150mg/L处理下Pro含量相对较高，其中，绿丰2号叶片的Pro含量较CK处理分别增加了92.03%和118.89%，绿丰5号叶片的Pro含量较CK处理均增加了187.24%，随后呈下降趋势。说明在100和150mg/L处理下，Pro-Ca对Pro的调节能力强。双因素分析表明，不同浓度Pro-Ca对绿豆叶片可溶性糖和可溶性蛋白含量的影响均达极显著差异水平，不同浓度Pro-Ca与不同品种交互作用显示，除对Pro含量无显著影响外，对绿豆叶片可溶性糖和可溶性蛋白含量均达极显著差异水平。
2.4 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期抗氧化酶活性的影响
2.4.1 Pro-Ca对SOD活性的影响
从表3可以看出，在盐碱胁迫下，各处理组绿豆叶片SOD活性均高于CK，并随着Pro-Ca浓度的增加其活性呈先增加后降低的趋势，均在100mg/L处理下达到峰值，与对照相比呈显著差异水平。绿丰2号和绿丰5号叶片SOD活性较同期CK相比分别增加了16.90%和12.57%，当Pro-Ca浓度超过100mg/L时，SOD的活性开始下降。说明盐碱胁迫下喷施Pro-Ca可提高绿豆叶片的SOD活性，减少绿豆体内活性氧自由基对细胞造成的伤害，且在100mg/L处理下绿豆叶片SOD活性最强，之后随着浓度的增加SOD活性反而降低。
表3 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期SOD，POD和CAT活性的影响
Table 3
| 处理浓度 Treatment concentration (mg/L) | 品种 Variety | SOD活性 SOD activity (U/g FW) | POD活性 POD activity (U/g FW) | CAT活性 CAT activity (U/g FW) |
|---|---|---|---|---|
| 0(CK) | 绿丰2号 | 285.71±4.79a | 1188.89±732.07a | 311.11±27.76a |
| 绿丰5号 | 310.08±18.43a | 877.78±150.31b | 404.44±20.37a | |
| 50 | 绿丰2号 | 323.81±15.74bc | 2388.89±171.05a | 337.78±40.73a |
| 绿丰5号 | 330.90±19.17a | 1788.89±69.39ab | 524.44±7.70a | |
| 100 | 绿丰2号 | 334.00±2.03c | 3644.44±509.18a | 466.67±48.07a |
| 绿丰5号 | 349.06±23.93b | 2344.44±101.84a | 546.67±0.00a | |
| 150 | 绿丰2号 | 319.82±21.48c | 2433.33±200.00a | 391.11±20.37a |
| 绿丰5号 | 324.25±5.79a | 2255.56±69.39ab | 471.11±7.70a | |
| 200 | 绿丰2号 | 310.08±18.09b | 1911.11±69.39a | 315.56±7.70a |
| 绿丰5号 | 318.05±2.77a | 1988.89±830.22ab | 317.78±27.76a | |
| F值F-value | 处理 | 6.566** | 18.911** | 33.286** |
| 品种 | 4.367 | 10.008** | 135.309** | |
| 处理×品种 | 0.408 | 2.614 | 4.605** |
2.4.2 Pro-Ca对POD活性的影响
从表3可以看出，2个绿豆品种叶片POD活性随着Pro-Ca浓度的增加呈先升后降的趋势，且POD活性都在100mg/L处理下显著高于CK处理并达到峰值。绿丰2号和绿丰5号叶片的POD活性与CK处理相比分别增加了206.54%和167.09%，当Pro-Ca浓度超过100mg/L时POD活性开始下降。说明喷施Pro-Ca可以提高盐碱胁迫下绿豆叶片的POD活性，从而缓解盐碱胁迫对绿豆造成的伤害。从总体上来看，100mg/L Pro-Ca处理为最适浓度，且对具有一定耐盐能力的绿丰2号调控效果更好。
2.4.3 Pro-Ca对CAT活性的影响
从表3可以看出，2个绿豆品种叶片CAT活性均随着Pro-Ca浓度的增加呈先上升后降低的趋势，各处理组绿豆叶片CAT活性均高于CK处理。其中在50、100和150mg/L处理下与CK处理相比达差异显著水平，绿丰2号与CK处理相比依次分别增加了8.50%、50.00%和25.71%，绿丰5号分别增加了29.67%、35.17%和16.48%。双因素分析表明不同浓度Pro-Ca对绿豆叶片SOD、POD和CAT活性的影响均达极显著差异水平，但不同浓度Pro-Ca与不同品种交互作用除对CAT影响极显著外，对SOD和POD活性均无显著影响。
2.5 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期MDA含量的影响
如表4所示，盐碱胁迫下各处理组绿豆叶片MDA含量均低于CK处理。在100和200mg/L处理下绿丰2号和绿丰5号叶片MDA含量与CK处理相比达显著差异水平，且在200mg/L处理下叶片MDA含量均达到最低，分别比CK处理降低36.07%和17.12%。说明盐碱胁迫下，外源施加Pro-Ca均可降低绿豆叶片MDA含量，从而降低绿豆膜质过氧化程度，增加细胞膜结构稳定性。双因素分析表明，不同浓度Pro-Ca及不同品种类型对绿豆MDA含量影响达极显著差异水平，但交互作用显示不同浓度Pro-Ca对盐碱胁迫下绿丰2号和绿丰5号MDA含量无显著影响。
表4 Pro-Ca对盐碱胁迫下绿豆苗期MDA含量的影响
Table 4
| 处理浓度 Treatment concentration (mg/L) | 品种 Variety | MDA含量 MDA content (mmol/g FW) |
|---|---|---|
| 0 (CK) | 绿丰2号 | 33.99±0.84a |
| 绿丰5号 | 23.66±0.67a | |
| 50 | 绿丰2号 | 28.52±7.57bc |
| 绿丰5号 | 22.21±0.28a | |
| 100 | 绿丰2号 | 26.20±0.51c |
| 绿丰5号 | 20.99±1.38b | |
| 150 | 绿丰2号 | 26.02±0.44c |
| 绿丰5号 | 22.00±2.20a | |
| 200 | 绿丰2号 | 21.73±0.55b |
| 绿丰5号 | 19.61±0.60a | |
| F值F-value | 处理 | 7.953** |
| 品种 | 35.401** | |
| 处理×品种 | 2.124 |
3 讨论
植物的株高、茎粗、干物质积累量及根冠比等生长指标是植物耐盐碱能力最直接的反映和表现。在盐碱胁迫下，植物的生长指标会受到不同程度的抑制，根冠比增加[17⇓-19]。目前，植物生长调节剂已被广泛推广并应用于提高作物的抗性能力方面。本研究发现，在盐碱胁迫下，叶面喷施Pro-Ca可在一定程度上降低绿豆株高，促进地上部和地下部干物质积累，其中，在不同浓度Pro-Ca处理下绿豆的地上部干重虽有不同程度的增加，但不显著。地下部干重在100mg/L处理下与CK处理相比呈显著差异水平，说明Pro-Ca对盐碱胁迫下绿丰2号和绿丰5号的地下部干重影响比地上部更显著。根冠比增加是植物的一种自我保护效应，有利于植物吸收水分和营养物质，降低蒸腾速率和缓解由各种胁迫造成的缺水伤害[20]。本研究发现，100mg/L Pro-Ca可增加绿豆根冠比。因此，Pro-Ca有助于缓解盐碱胁迫对绿豆造成的损伤。
渗透调节是植物响应盐碱胁迫的一种有效策略，在盐碱胁迫下，植物通过在代谢过程中积累与合成可溶性糖、可溶性蛋白和Pro等渗透调节物质来平衡体内细胞的渗透势，进而缓解盐碱胁迫造成的伤害[23⇓⇓⇓-27]。Bekheta等[15]研究发现，Pro-Ca可以促进盐胁迫下蚕豆体内渗透调节物质的积累来提高耐盐性。Aghdam[28]研究发现，Pro-Ca可以大大增加番茄中Pro含量，从而增强对冷害的抗性。本试验结果表明，Pro-Ca可以增加盐碱胁迫下绿豆叶片的可溶性糖、可溶性蛋白和Pro含量，其中，可溶性糖和Pro含量随着Pro-Ca的增加呈先增后降的趋势，且均在100mg/L处理下达到峰值；绿丰2号和绿丰5号叶片可溶性蛋白含量分别在50和100mg/L的Pro-Ca处理下达到最大值，随后逐渐降低。从总体上来看，100mg/L Pro-Ca处理时效果最佳，表明外源施加Pro-Ca可以增加绿豆叶片渗透调节物质含量，增强绿豆对盐碱胁迫的抵抗能力，维持植株正常生长。
盐碱胁迫可导致植物体内活性氧代谢紊乱，造成细胞膜脂过氧化，甚至诱导细胞死亡。而抗氧化酶系统是植物对盐胁迫响应抵御盐害的关键机制，其中，抗氧化酶SOD、POD和CAT可以清除植物体内的活性氧，增强抗膜质过氧化作用，缓解盐碱胁迫的伤害[29]。本试验发现，外源施加Pro-Ca均可提高绿豆叶片的SOD、POD和CAT活性，且总体上均随着Pro-Ca浓度的增加呈先上升后下降的趋势，并在100mg/L处理下达到峰值，其中Pro-Ca对SOD活性的调控效果在2个绿豆品种上差异不显著，而POD活性的增强在耐盐品种中作用效果更好，CAT的作用效果同样要低于盐敏感型品种。MDA是膜脂过氧化反应的主要产物之一，在盐碱环境下会损伤自身细胞膜系统，引起膜脂过氧化反应，其含量的多少在一定程度上反映膜损伤程度的大小[30-31]。本试验发现，外源施加Pro-Ca降低了MDA含量，维持了细胞膜的稳定性，这与Ramírez等[32]的研究结果相似，说明外源施加Pro-Ca可增强绿豆的抗氧化保护系统，减少植物体内过氧化物积累，从而降低膜质过氧化程度，增强绿豆在盐碱胁迫下的抗性能力。
4 结论
不同浓度的Pro-Ca可以增加绿豆叶片SPAD，保证正常光合活动，提高渗透物质可溶性糖、可溶性蛋白和Pro含量，维持植物细胞渗透势，同时诱导抗氧化酶SOD、POD及CAT活性增强，降低叶片的MDA含量，以清除过氧化物积累，降低膜质过氧化程度，从而增加盐碱胁迫下绿豆苗期根冠比和地上、地下部干重，缓解盐碱胁迫对绿豆植株造成的伤害，提高盐碱抗性。综合不同浓度Pro-Ca对绿豆的调控效果，初步确定100mg/L为缓解绿豆盐碱胁迫的最佳浓度。
参考文献
Soil salinization research in China:advances and prospects
DOI:10.1007/s11442-014-1130-2 URL [本文引用: 1]
Reclamation of salt-affected soils
Physico-chemical characteristics and microbial composition of saline-alkaline soils in Songnen Plain
Genotypic differences in dinitrogen fixation response to NaCl stress in intact and grafted soybean
DOI:10.2135/cropsci1998.0011183X003800010013x URL [本文引用: 1]
Nutrient uptake and yield of mung bean [Vigna radiata (L.) Wilczek] as influenced by organic manures,PSB and phosphorus fertilization
Screening mungbean [Vigna radiata (L.) Wilczek] genotypes for mungbean yellow mosaic virus resistance under natural condition
Effects of a plant growth regulator,prohexadione calcium (BX-112),on the elongation of rice shoots caused by exogenously applied gibberellins and helminthosporol,Part II1
Reduced risk concept for prohexadione-calcium,avegetative growth control plant growth regulator in apples
Mitigation of postharvest chilling injury in tomato fruit by prohexadione calcium
DOI:10.1007/s13197-013-0994-y
PMID:24426014
[本文引用: 1]
Storage of tomato (Solanum lycopersicum) as originally tropical fruit is limited by the risk of chilling injury (CI). To develop an effective technique to reduce CI, the effects of treatment with 0, 50 and 100 μM prohexadione-calcium (Pro-Ca) on CI, electrolyte leakage (EL), malondialdehyde (MDA) and proline contents, and activities of phospholipase D (PLD) and lipoxygenase (LOX), were investigated in tomato fruit stored at 1°C for 21 days. Treatment with Pro-Ca, without significant difference between two applied concentrations, significantly mitigated chilling injury. Also, Pro-Ca treatment maintained lower levels of EL and MDA content, higher level of proline content and inhibited the increases in PLD and LOX activities compared with the control fruit. These results suggest that Pro-Ca might mitigate CI by inhibiting PLD and LOX activities and by enhancing membrane integrity.
The enhancement of drought stress tolerance of kentucky bluegrass by prohexadione-calcium treatment
Physiological response of vicia faba to prohexadione-calcium under saline conditions
DOI:10.1590/S0100-83582009000400015 URL [本文引用: 3]
Water deficit stress effects on corn (Zea mays L.) root: shoot ratio
Effects of soil salinity on growth,ion relations,and compatible solute accumulation of two sumac species:Rhus glabra and Rhus trilobata
DOI:10.1080/00103624.2013.832289 URL [本文引用: 1]
Effect of salt stress on germination and seedling growth of Prosopis juliflora (Sw.)
DOI:10.1007/s11056-011-9265-9 URL [本文引用: 1]
Water stress and hormonal response,water and plant life
Mycorrhizal infection ameliorates chlorophyll content and nutrient uptake of lettuce exposed to saline irrigation
DOI:10.17221/2209-PSE URL [本文引用: 1]
Prohexadione calcium on the growth and quality of eggplant seedlings
DOI:10.1590/S0100-204X2015001000009 URL [本文引用: 1]
Plant cellular and molecular responses to high salinity
Response of seedling growth and physiology of Sorghum bicolor (L.) Moench to saline-alkali stress
Stress-induced synthesis of proline confers tolerance to water deficit in transgenic wheat
Water deficit is one of the main abiotic factors that affect spring wheat planted in subtropical regions. Accumulation of proline appears to be a promising approach to maintain the productivity of plants under stress condition. However, morphological alterations and growth reduction are observed in transgenic plants carrying genes coding for osmoprotectants controlled by constitutive promoters. We report here the effects of water deficit on wheat plants transformed with the Vigna aconitifolia Delta(1)-pyrroline-5-carboxylate synthetase (P5CS) cDNA that encodes the key regulatory enzyme in proline biosynthesis, under the control of a stress-induced promoter complex-AIPC. Transgenic wheat plants submitted to 15 days of water shortage presented a distinct response. We have found that drought resulted in the accumulation of proline. The tolerance to water deficit observed in transgenic plants was mainly due to protection mechanisms against oxidative stress and not caused by osmotic adjustment.
Effects of salt stress on pigment and total soluble protein contents of three different tomato cultivars
Physiological responses and adaptive strategies of tomato plants to salt and alkali stresses
DOI:10.1016/j.scienta.2011.07.006 URL [本文引用: 1]
Mitigation of postharvest chilling injury in tomato fruit by prohexadione calcium
DOI:10.1007/s13197-013-0994-y
PMID:24426014
[本文引用: 1]
Storage of tomato (Solanum lycopersicum) as originally tropical fruit is limited by the risk of chilling injury (CI). To develop an effective technique to reduce CI, the effects of treatment with 0, 50 and 100 μM prohexadione-calcium (Pro-Ca) on CI, electrolyte leakage (EL), malondialdehyde (MDA) and proline contents, and activities of phospholipase D (PLD) and lipoxygenase (LOX), were investigated in tomato fruit stored at 1°C for 21 days. Treatment with Pro-Ca, without significant difference between two applied concentrations, significantly mitigated chilling injury. Also, Pro-Ca treatment maintained lower levels of EL and MDA content, higher level of proline content and inhibited the increases in PLD and LOX activities compared with the control fruit. These results suggest that Pro-Ca might mitigate CI by inhibiting PLD and LOX activities and by enhancing membrane integrity.
Salt tolerance and salinity effects on plants: a review
Plants exposed to salt stress undergo changes in their environment. The ability of plants to tolerate salt is determined by multiple biochemical pathways that facilitate retention and/or acquisition of water, protect chloroplast functions, and maintain ion homeostasis. Essential pathways include those that lead to synthesis of osmotically active metabolites, specific proteins, and certain free radical scavenging enzymes that control ion and water flux and support scavenging of oxygen radicals or chaperones. The ability of plants to detoxify radicals under conditions of salt stress is probably the most critical requirement. Many salt-tolerant species accumulate methylated metabolites, which play crucial dual roles as osmoprotectants and as radical scavengers. Their synthesis is correlated with stress-induced enhancement of photorespiration. In this paper, plant responses to salinity stress are reviewed with emphasis on physiological, biochemical, and molecular mechanisms of salt tolerance. This review may help in interdisciplinary studies to assess the ecological significance of salt stress.
Effect of salt stress on antioxidative enzymes and lipid peroxidation in leaves and roots of salt-tolerant and salt-sensitive maize genotypes
DOI:10.1016/j.envexpbot.2005.01.008 URL [本文引用: 1]
Physiological indicators of tolerance to cold storage in Sitka spruce and Douglas-fir seedlings
DOI:10.1139/x91-124 URL [本文引用: 1]
Prohexadione calcium increases antioxidant capacity,lycopene content and enzymatic activity in fruits of tomato Floradade. Revista Chapingo
