金荞不同器官提取物对几种杂草种子萌发的影响及其安全性研究
The Effects of Extracts from Different Organs of Fagopyrum cymosum on Seed Germination of Several Weeds and Its Safety to Crops
通讯作者:
收稿日期: 2022-02-14 修回日期: 2022-04-11
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Received: 2022-02-14 Revised: 2022-04-11
作者简介 About authors
欧阳屹南,主要从事植物学研究,E-mail:
通过考察不同溶剂及金荞提取物对拟南芥种子萌发的影响,分析了几种有机溶剂作为金荞化感物质提取溶剂的可行性,并研究了金荞不同器官提取物对杂草种子萌发和除草安全性的影响。结果表明,金荞茎5%甲醇提取物能明显抑制黑麦草和羊茅种子的萌发,化感效应指数分别为-0.35和-0.33,可作为两者除草剂的研究材料;金荞提取物对甜荞、苦荞、燕麦和小麦种子萌发没有显著影响,在生产实践中可作为这4种作物的生物除草材料;金荞提取物对大麦种子萌发影响较大,不宜在大麦生产中作为生物除草材料。
关键词:
Abstract The effects of different solvents and F.cymosum extract on seed germination of Arabidopsis thaliana was investigated, the feasibilities of several organic solvents as the extraction solvents of allelopathic substances from F.cymosum were analyzed, also the effects and safety of F.cymosum extracts from different organs on weed seed germination were studied. The results showed that methanol extract of stems of F.cymosum at 5% concentration significantly inhibited seed germination of ryegrass and fescue, with allelopathic effect indexes of -0.35 and -0.33, respectively, which could be used as herbicide materials for both. The extracts of F.cymosum had no significant effect on seed germination of buckwheat, tartary buckwheat, oat and wheat. In production practice, F.cymosum extract could be used as biological weeding material for the four crops. F.cymosum extract had great effects on barley seed germination, so it should not be used as biological weeding material in barley production.
Keywords:
本文引用格式
欧阳屹南, 刘洋, 沈伦豪, 任奎, 赵辉, 唐新科, 周美亮.
Ouyang Yinan, Liu Yang, Shen Lunhao, Ren Kui, Zhao Hui, Tang Xinke, Zhou Meiliang.
化感作用是植物产生和释放的防御性代谢产物(化感物质)对同种或异种植物产生负面影响的一种干扰机制。植物化感物质主要为次生代谢物,其成分复杂且存在一物多效和一效多物现象。化感作用作为植物适应环境的一种机制,作用温和却行之有效,并具有一定的特异性,不同的植物具有不同甚至相反的化感作用[4]。植物化感作用的研究一直是生物除草极为关键的环节。
金荞是蓼科(Polygonaceae)荞麦属(Fagopyrum Mill.)多年生双子叶草本植物,是荞麦属中主要的野生种[10]。金荞作为药食两用作物[11],在中国及其他国家均具有悠久的种植历史[12]。金荞生药及化学成分主要为一类原花色素苷类缩合型单宁混合物,还含有鞣质类、黄酮类、苷类、甾体类、萜类、挥发油类和有机物类化合物等[13-14]。与大多数植物类似,金荞分泌的化感物质大多为亲脂性[4]。为全面探究金荞化感物质对杂草的抑制效果,本研究选取低毒有机溶剂提取金荞的活性物质,采用MS培养基法和滤纸法比较研究了金荞根、茎、叶3个器官的化感物质对3种杂草种子萌发的影响,并对其安全性进行评估[2],为荞麦杂草防控技术在农业生产中的应用提供理论依据和科学指导。
1 材料与方法
1.1 供试材料
供试草本植物种子为拟南芥(Arabidopsis thaliana)、黑麦草(Lolium perenne)、羊茅(Festuca ovina)和波斯菊(Cosmos bipinnata)[15],均由中国农业科学院蔬菜花卉研究所提供。供试作物种子为金荞、甜荞(Fagopyrum esculentum)、苦荞(Fagopyrum tataricum)、燕麦(Avena sativa)、小麦(Triticum aestivum)和大麦(Hordeum vulgare),均由中国农业科学院作物科学研究所提供。
1.2 金荞提取物的制备
取金荞新鲜根、茎、叶洗净,烘箱65℃处理4~5h至恒重,使用粉碎机粉碎,过40目筛。称取1g粉末,以1g:30mL的料液比混合粉末和提取剂(蒸馏水,或75%乙醇,或75%甲醇),用50℃超声波处理30min,4层纱布过滤取滤液(或8000转/min离心5~10min后取上清液,根据不同部位提取物适当调整离心条件),用0.22μm滤膜抽滤,即为荞麦提取物原液。用蒸馏水将不同种类和体积的原液定容至一定体积制成后续所需的稀释液,并用0.22μm针筒过滤除菌,密封避光保存备用[16]。
1.3 种子处理
1.3.1 种子灭菌
拟南芥:取1/4体积种子于2mL离心管中,加入2mL 75%乙醇持续上下颠倒10min后倒掉液体,加入2mL无水乙醇上下颠倒灭菌10min,晾置数小时至完全干燥。苦荞、甜荞和杂草种子:取1/4体积种子于50mL离心管中,加入50mL 10% NaClO持续上下颠倒7min后倒掉液体,加入50mL 75%乙醇持续上下颠倒灭菌5min后倒掉液体,加入50mL无菌水上下颠倒洗刷数次,重复用无菌水洗刷5~6次,倒掉液体,晾置数小时至完全干燥。燕麦、小麦和大麦种子:取1/4体积种子于50mL离心管中,加入1% H2O2 50mL摇匀后4℃冰箱静置过夜,在无菌超净台中用无菌水洗5~6次,倒掉液体,晾置数小时至完全干燥,以上均严格遵守无菌操作。
1.3.2 制备MS固体培养基
MS培养基(1L):称取4.43g MS粉末(Murashige skoeg Basal Medium with Vitamin)和30g蔗糖,溶解定容至1L,用5mol/L NaOH溶液调节pH至5.8~6.2,加入植物凝胶2.7g,高压蒸汽灭菌。含稀释液的MS培养基(1L):定容900mL,在无菌超净台中分别将25%、50%和100%的无菌稀释液以1:9的比例混合制成不同终浓度的培养基,每个培养皿倒入25mL培养基,凝固后避光常温放置。
1.3.3 提取和处理方法
表1 不同溶剂及浓度的金荞提取物处理
Table 1
提取物 Extract | 含量Content | ||
---|---|---|---|
2.5% | 5.0% | 10.0% | |
水提物Water extract | a-① | a-② | a-③ |
甲醇Methanol | b-① | b-② | b-③ |
甲醇提取物Methanol extract | c-① | c-② | c-③ |
乙醇Ethanol | d-① | d-② | d-③ |
乙醇提取物Ethanol extract | e-① | e-② | e-③ |
1.3.4 种子培养
每板50粒拟南芥种子均匀播种至培养基中。杂草种子和作物种子均采用滤纸萌发的方法,每个培养皿铺3层灭菌滤纸,加入6mL稀释液,其中杂草种子播种30粒,作物种子播种20粒。所有种子播种后均在4℃冰箱中放置48h,之后置于28℃恒温培养室黑暗培养7d,计算每天的萌发率(germination rate),3d时计算种子的发芽指数及化感效应指数,7d时计算种子的发芽率(germination percentage,GP)等指标。
计算公式如下,萌发率(%)=(第t天发芽种子数/受试种子数)×100;GP(%)=(第7天发芽种子数/受试种子数)×100;发芽指数(germination index,GI)=∑(Gt/Dt);化感效应指数(response index,RI)=1-(C/T),(T≥C)或RI=(T/C)-1,(T<C)。其中,发芽率与第7天的萌发率相等;式中,Gt为第t天的种子萌发数目,Dt是相应的发芽天数;发芽指数是利用前3d数据进行计算,化感效应指数是利用发芽指数计算,C为对照各调查指标平均值,T为不同处理各调查指标平均值。RI>0表示促进,RI<0表示抑制,RI绝对值大小表示化感物质对植物化感作用的强度[15,17]。
1.4 数据处理
利用Microsoft Excel Office 16作图,用Origin 2021进行方差分析和差异显著性分析。
2 结果与分析
2.1 对拟南芥种子萌发的影响
如图1和表2所示,2.5%、5%、10%的乙醇溶剂和10%的甲醇溶剂能完全抑制拟南芥种子萌发,发芽率均为0.00%。3种浓度下水提物处理的拟南芥种子萌发趋势为随浓度的升高而降低,在1~4d存在显著性差异,萌发化感效应指数分别为0.58、0.13和-0.49,但5~7d的生长曲线和发芽率与CK基本一致,说明金荞水提物在拟南芥萌发初期有明显的化感作用,且呈现“低促高抑”的现象。甲醇提取物相较于甲醇对拟南芥种子萌发的抑制作用更明显,2.5%和5.0%甲醇提取物的化感效应指数分别为-0.78 和-1.00,比较两者的萌发曲线和生长状况(图1)可知,5.0%甲醇提取物对拟南芥种子萌发的抑制作用高于2.5%浓度。同时,鉴于荞麦中绝大多数作用于植物的鞣质类、黄酮类和苷类等化感物质均难溶于水[14],选取75%甲醇为溶剂,5.0%为稀释液浓度为后续金荞不同器官提取物的作用条件。
图1
图1
不同金荞提取物处理7d后拟南芥种子的萌发情况
Fig.1
Germination of A.thaliana seeds treated with different F.cymosum extracts for seven days
表2 不同溶剂及浓度的金荞提取物对拟南芥种子萌发的影响
Table 2
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | 4d | 5d | 6d | ||||
CK | 5.33±1.15bc | 20.67±1.15b | 51.33±3.05bc | 80.67±1.15ab | 82.67±4.62ab | 84.67±3.05ab | 85.33±3.05abc | 0.33±0.01b | - |
a-① | 19.33±1.15a | 63.33±4.62a | 80.00±5.29a | 82.67±4.62a | 86.67±5.03ab | 87.33±6.11ab | 87.33±6.11abc | 0.78±0.00a | 0.58 |
a-② | 5.33±3.05bc | 22.67±7.57b | 62.67±13.32ab | 82.00±8.72a | 87.33±7.57ab | 88.00±6.93ab | 88.67±6.43ab | 0.38±0.06b | 0.13 |
a-③ | 1.33±2.31cd | 8.67±9.87c | 32.67±18.47cd | 62.00±21.17bc | 83.33±11.01ab | 86.67±9.45ab | 86.67±9.45abc | 0.17±0.08c | -0.49 |
b-① | 7.33±4.16b | 22.00±4.00b | 61.33±12.70ab | 88.00±2.00a | 94.00±4.00a | 94.00±4.00a | 94.00±4.00a | 0.39±0.06b | 0.15 |
b-② | 0.00±0.00d | 2.00±2.00c | 12.00±2.00e | 50.67±11.37cd | 86.67±3.05ab | 88.00±3.46ab | 88.00±3.46abc | 0.05±0.01cd | -0.85 |
b-③ | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
c-① | 0.00±0.00d | 2.00±2.00c | 18.67±2.31de | 42.00±3.46d | 74.67±6.43b | 77.33±5.03b | 79.33±6.43bc | 0.07±0.01cd | -0.78 |
c-② | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 4.67±1.15e | 31.33±5.77c | 62.00±3.46c | 76.00±5.29c | 0.00±0.00d | -1.00 |
c-③ | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
d-① | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
d-② | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
d-③ | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
e-① | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
e-② | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
e-③ | 0.00±0.00d | 0.00±0.00c | 0.00±0.00e | 0.00±0.00e | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | 0.00±0.00d | -1.00 |
数据后小写字母表示5%差异显著水平,下同
The small letters after data indicate significant difference at 5% level, the same below
2.2 对杂草种子萌发的影响
2.2.1 对黑麦草种子萌发的影响
表3 金荞不同器官甲醇提取物对黑麦草种子萌发的影响
Table 3
处理 Treatment | 萌发率Germination rate(%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | 4d | 5d | 6d | ||||
CK | 62.22±18.36a | 78.89±12.62a | 91.11±1.92a | 91.11±1.92a | 92.22±3.85a | 92.22±3.85a | 92.22±3.85a | 1.32±0.25a | - |
MT | 40.00±5.77ab | 75.56±7.70a | 83.33±0.00a | 86.67±3.33a | 87.78±3.85a | 87.78±3.85a | 87.78±3.85a | 1.06±0.10ab | -0.20 |
RM | 37.78±6.94ab | 73.33±12.02a | 92.22±7.70a | 92.22±7.70a | 94.44±3.85a | 94.44±3.85a | 94.44±3.85a | 1.05±0.11ab | -0.20 |
SM | 25.56±6.94b | 61.11±7.70a | 91.11±3.85a | 91.11±3.85a | 92.22±5.09a | 92.22±5.09a | 92.22±5.09a | 0.86±0.11b | -0.35 |
LM | 33.33±6.67b | 74.44±1.92a | 86.67±3.33a | 87.78±1.92a | 90.00±8.82a | 90.00±8.82a | 90.00±8.82a | 0.99±0.08ab | -0.25 |
CK:水;MT:5%甲醇;RM:根甲醇提取物;SM:茎甲醇提取物;LM:叶甲醇提取物。下同
CK: water; MT: 5% methanol; RM: methanol extract of roots; SM: methanol extract of stems; LM: methanol extract of leaves. The same below
2.2.2 对羊茅种子萌发的影响
表4 金荞不同器官甲醇提取物对羊茅种子萌发的影响
Table 4
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | 4d | 5d | 6d | ||||
CK | 0.00±0.00a | 7.78±1.92a | 25.56±6.94a | 45.56±8.39a | 68.89±8.39a | 74.44±8.39a | 75.56±10.18a | 0.12±0.03a | - |
MT | 0.00±0.00a | 4.44±1.92a | 21.11±7.70a | 40.00±6.67a | 53.33±5.77ab | 64.44±1.92a | 66.67±3.33a | 0.09±0.03a | -0.25 |
RM | 0.00±0.00a | 2.22±1.92a | 17.78±1.92a | 30.00±8.82a | 45.56±13.88ab | 60.00±6.67a | 61.11±5.09a | 0.07±0.01a | -0.43 |
SM | 0.00±0.00a | 3.33±3.33a | 20.00±11.55a | 32.22±9.62a | 40.00±11.55b | 55.56±11.71a | 56.67±10.00a | 0.08±0.05a | -0.33 |
LM | 0.00±0.00a | 3.33±3.33a | 17.78±10.71a | 34.44±1.92a | 58.89±10.18ab | 67.78±8.39a | 68.89±6.94a | 0.08±0.05a | -0.39 |
图2
图2
不同金荞提取物处理7d后3种草本植物种子的萌发情况
CK:水;MT:5%甲醇;RM:根甲醇提取物;SM:茎甲醇提取物;LM:叶甲醇提取物。Lp:黑麦草;Fo:羊茅;Cb:波斯菊,下同
Fig.2
Germination of seeds of three herbaceous plants treated with different buckwheat extracts for seven days
CK: water; MT: 5% methanol; RM: methanol extract of roots; SM: methanol extract of stems; LM: methanol extract of leaves. Lp: L.perenne, Fo: F.ovina, Cb: C.bipinnata, the same below
2.2.3 对波斯菊种子萌发的影响
表5 金荞不同器官甲醇提取物对波斯菊种子萌发的影响
Table 5
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | |||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | 4d | 5d | 6d | ||||
CK | 28.89±5.09a | 63.33±3.33a | 77.78±7.70ab | 77.78±7.70a | 81.11±6.94a | 81.11±6.94a | 81.11±6.94a | 0.86±0.03a | - |
MT | 32.22±11.71a | 66.67±5.77a | 82.22±3.85a | 83.33±3.33a | 83.33±3.33a | 83.33±3.33a | 83.33±3.33a | 0.93±0.13a | 0.07 |
RM | 43.33±10.00a | 68.89±10.71a | 76.67±6.67ab | 78.89±5.09a | 78.89±5.09a | 78.89±5.09a | 78.89±5.09a | 1.03±0.17a | 0.10 |
SM | 46.67±14.53a | 63.33±5.77a | 80.00±5.77a | 80.00±5.77a | 83.33±3.33a | 83.33±3.33a | 83.33±3.33a | 1.05±0.13a | 0.11 |
LM | 43.33±6.67a | 54.44±1.92a | 63.33±3.33b | 74.44±3.85a | 74.44±3.85a | 74.44±3.85a | 74.44±3.85a | 0.92±0.08a | -0.01 |
2.3 对作物种子发芽的安全性分析
2.3.1 对甜荞种子萌发的影响
图3
图3
金荞不同器官甲醇提取物处理7d后5种作物种子萌发情况
Fe:甜荞;Ft:苦荞;As:燕麦;Ta:小麦;Hv:大麦
Fig.3
Seed germination of five crops after seven days of treatment with methanol extracts from different F.cymosum organs
Fe: F.esculentum; Ft: F.tataricum; As: A.sativa; Ta: T.aestivum; Hv: H.vulgare
表6 金荞不同器官甲醇提取物对甜荞种子萌发的影响
Table 6
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | ||
---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | ||||
CK | 8.33±7.64a | 51.67±15.27a | 61.67±10.41a | 75.00±18.03a | 0.55±0.10ab | - |
MT | 1.67±2.89a | 43.33±16.07a | 45.00±8.66a | 66.67±5.77a | 0.38±0.12ab | -0.30 |
RM | 6.67±2.89a | 45.00±5.00a | 55.00±5.00a | 63.33±7.64a | 0.48±0.01ab | -0.13 |
SM | 0.00±0.00a | 36.67±7.64a | 43.33±14.43a | 56.67±10.41a | 0.33±0.08b | -0.40 |
LM | 18.33±15.27a | 55.00±5.00a | 63.33±7.64a | 80.00±8.70a | 0.67±0.16a | 0.18 |
2.3.2 对苦荞种子萌发的影响
表7 金荞不同器官甲醇提取物对苦荞种子萌发的影响
Table 7
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | ||
---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | ||||
CK | 0.00±0.00b | 91.67±2.89a | 98.33±2.89a | 98.33±2.89a | 0.79±0.02b | - |
MT | 0.00±0.00b | 90.00±5.00a | 96.67±2.89a | 96.67±2.89a | 0.77±0.03b | -0.02 |
RM | 1.67±2.89b | 95.00±5.00a | 93.33±2.89a | 93.33±2.89a | 0.80±0.05b | 0.02 |
SM | 0.00±0.00b | 93.33±2.89a | 96.67±2.89a | 96.67±2.89a | 0.79±0.02b | 0.00 |
LM | 31.67±7.64a | 95.00±5.00a | 95.00±5.00a | 95.00±5.00a | 1.11±0.11a | 0.37 |
2.3.3 对燕麦种子萌发的影响
表8 金荞不同器官甲醇提取物对燕麦种子萌发的影响
Table 8
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | ||
---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | ||||
CK | 0.00±0.00a | 83.33±2.89a | 90.00±5.00a | 98.33±2.89a | 0.72±0.03a | - |
MT | 0.00±0.00a | 68.33±16.07a | 86.67±7.64a | 96.67±2.89a | 0.63±0.99a | -0.12 |
RM | 0.00±0.00a | 86.67±2.89a | 93.33±2.89a | 98.33±2.89a | 0.74±0.21a | 0.04 |
SM | 6.67±11.55a | 81.67±10.41a | 85.00±13.23a | 98.33±2.89a | 0.76±0.17a | 0.05 |
LM | 0.00±0.00a | 70.00±0.00a | 86.67±2.89a | 100.00±0.00a | 0.64±0.01a | -0.11 |
2.3.4 对小麦种子萌发的影响
表9 金荞不同器官甲醇提取物对小麦种子萌发的影响
Table 9
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | ||
---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | ||||
CK | 51.67±2.89a | 85.00±5.00a | 93.33±5.77a | 100.00±0.00a | 1.25±0.07a | - |
MT | 30.00±17.56a | 81.67±5.77a | 93.33±2.89a | 96.67±5.77a | 0.94±0.18a | -0.25 |
RM | 43.33±11.55a | 86.67±2.89a | 95.00±5.00a | 100.00±0.00a | 1.18±0.12a | -0.06 |
SM | 31.67±7.64a | 75.00±5.00a | 86.67±2.89a | 98.33±2.89a | 0.98±0.07a | -0.22 |
LM | 31.67±15.27a | 78.33±16.07a | 95.00±5.00a | 98.33±2.89a | 1.03±0.24a | -0.18 |
2.3.5 对大麦种子萌发的影响
表10 金荞不同器官甲醇提取物对大麦种子萌发的影响
Table 10
处理 Treatment | 萌发率Germination rate (%) | 发芽率 Germination percentage (%) | 发芽指数 Germination index | 化感效应指数 Response index | ||
---|---|---|---|---|---|---|
1d | 2d | 3d | ||||
CK | 11.67±16.07a | 48.33±10.41a | 58.33±16.07a | 68.33±2.89ab | 0.55±0.23a | - |
MT | 6.67±2.89a | 41.67±2.89a | 60.00±17.32a | 75.00±17.32a | 0.48±0.08ab | -0.14 |
RM | 0.00±0.00a | 40.00±3.00a | 50.00±15.00a | 56.67±16.07abc | 0.37±0.08ab | -0.34 |
SM | 5.00±5.00a | 13.33±5.77b | 30.00±13.23a | 35.00±17.32bc | 0.22±0.06b | -0.61 |
LM | 1.67±2.89a | 11.67±2.89b | 26.67±5.77a | 31.67±7.64c | 0.16±0.01b | -0.70 |
3 讨论
化感作用是植物与其他物种之间产生次生物质相互影响的一种现象[18],产生化感作用的次生物质被称为化感物质[19]。许多研究指出,苦荞秸秆还田具有良好的杂草抑制效应及增产效应[6,9,20],与此同时,荞麦化感物质对许多杂草有明显的抑制作用[21],对金荞提取物的抑草机制研究较少。金荞生药及化学成分主要为一类原花色素苷类缩合型单宁混合物[13-14],与苦荞抑制杂草的化感物质十分相似[22⇓⇓-25]。大多数脂溶性溶剂对植物具有一定的毒性,为了排除有机溶剂本身对杂草种子萌发的干扰,本研究以拟南芥为受试植物初步确定了金荞活性物质发挥化感作用的最佳条件,即75%甲醇为提取溶剂,5.0%为作用浓度,研究金荞有机溶剂提取物对黑麦草、羊茅和波斯菊3种杂草种子萌发的影响。
植物不同器官中化感物质的种类和含量分布差异较大,研究化感物质在植物体中的分布对生物除草剂的开发和利用具有重要意义[26]。本研究提取了金荞根、茎、叶3个器官的活性物质,探究它们对3种杂草种子萌发趋势和发芽率的影响,发现提取物对单子叶杂草黑麦草和羊茅的种子萌发有明显抑制作用,能不同程度地改变其萌发曲线,降低萌发率,而对双子叶杂草波斯菊种子萌发的影响十分有限。据此推测,金荞化感物质可能对单子叶草本植物有抑制特异性。
除化感物质的影响外,植物间还存在生长空间和资源的竞争[16]。在对金荞抑草机制分析中同样需考虑化感物质和植物竞争的协同作用。本研究中,金荞3种器官的甲醇提取物对杂草种子的抑制作用主要表现在萌发初期,但对种子培养7d的发芽率影响不大。由此推测,金荞含有的化感物质虽然不能完全抑制杂草种子的萌发,但可能通过延缓杂草种子初期的萌发,帮助金荞在生长早期取得竞争优势,从而进一步抑制杂草生长。
4 结论
金荞茎5.0%甲醇提取物对黑麦草和羊茅种子萌发有明显抑制作用,可用于黑麦草和羊茅除草剂的研究;金荞5.0%甲醇提取物对甜荞、苦荞、燕麦和小麦种子萌发均没有显著影响,可作为生物除草材料应用。
参考文献
Allelochemicals and signaling chemicals in plants
DOI:10.3390/molecules24152737
URL
[本文引用: 2]
Plants abound with active ingredients. Among these natural constituents, allelochemicals and signaling chemicals that are released into the environments play important roles in regulating the interactions between plants and other organisms. Allelochemicals participate in the defense of plants against microbial attack, herbivore predation, and/or competition with other plants, most notably in allelopathy, which affects the establishment of competing plants. Allelochemicals could be leads for new pesticide discovery efforts. Signaling chemicals are involved in plant neighbor detection or pest identification, and they induce the production and release of plant defensive metabolites. Through the signaling chemicals, plants can either detect or identify competitors, herbivores, or pathogens, and respond by increasing defensive metabolites levels, providing an advantage for their own growth. The plant-organism interactions that are mediated by allelochemicals and signaling chemicals take place both aboveground and belowground. In the case of aboveground interactions, mediated air-borne chemicals are well established. Belowground interactions, particularly in the context of soil-borne chemicals driving signaling interactions, are largely unknown, due to the complexity of plant-soil interactions. The lack of effective and reliable methods of identification and clarification their mode of actions is one of the greatest challenges with soil-borne allelochemicals and signaling chemicals. Recent developments in methodological strategies aim at the quality, quantity, and spatiotemporal dynamics of soil-borne chemicals. This review outlines recent research regarding plant-derived allelochemicals and signaling chemicals, as well as their roles in agricultural pest management. The effort represents a mechanistically exhaustive view of plant-organism interactions that are mediated by allelochemicals and signaling chemicals and provides more realistic insights into potential implications and applications in sustainable agriculture.
西藏地区荞麦与玉米混合青贮对发酵品质和微生物多样性的影响
DOI:10.11686/cyxb2018676
[本文引用: 1]
为探究西藏林芝市全株荞麦与全株玉米混合青贮对青贮饲料发酵品质和微生物多样性的影响,分别设定全株荞麦单独青贮组(A)、全株荞麦:全株玉米=4:1混合青贮组(B)、全株荞麦:全株玉米=3:2混合青贮组(C)、全株荞麦:全株玉米=2:3混合青贮组(D)和全株荞麦:全株玉米=1:4混合青贮组(E)共5个处理组。分别在青贮第7、14、30和60天时,开窖取样,测定青贮饲料的发酵品质和微生物菌群结构。结果表明,与全株荞麦单独青贮组相比,全株荞麦与全株玉米混合青贮组在一定程度上改变了青贮的发酵品质,混合青贮组降低了青贮饲料的pH值,提高了乳酸含量,且氨态氮/总氮的值和丁酸含量均符合优质青贮饲料的要求量。从微生物菌群结构来看,混合青贮改变了青贮饲料的菌群结构,相比与全株荞麦单独青贮组,混合青贮组提高了厚壁菌门和LAB菌种的丰度,有效地抑制了腐败菌的生长,且这种效果随着全株玉米混合比例越高而越显著。综合考虑全株荞麦利用最大化和发酵品质,建议将全株荞麦和全株玉米以2:3混合青贮较为适宜。
黄花蒿浸提液对4种草坪草种子萌发及幼苗生长的影响
DOI:10.11733/j.issn.1007-0435.2020.05.013
[本文引用: 2]
本研究采用不同浓度黄花蒿(Artemisia annua)地上和地下部浸提液在培养皿内处理4种草坪草种子并开展浸种发芽试验,结合种子萌发、幼苗生长指标和化感综合效应(Synthetic effect of allelopathy,SE)指标分析浸提液对幼苗的化感作用。种子萌发和幼苗生长指标表明,地上部和地下部浸提液抑制4类种子的萌发及幼苗根系的生长,但促进幼苗芽的生长。SE指数表明地上部浸提液抑制4类种子的萌发及幼苗的生长,对细弱翦股颖(Agrostis tenuis)的影响最大(SE=-0.32),对草地早熟禾(Poa pratensis)的影响最小(SE=-0.14);地下部浸提液促进黑麦草(Lolium perenne)种子的萌发及幼苗的生长(SE=0.10),但却抑制其它3类草坪草,对草地早熟禾的影响最大(SE=-0.22),对高羊茅(Festuca arundinacea)的影响最小(SE=-0.05)。本研究将为草坪建植坪床处理黄花蒿提供理论依据。
圆柏对几种农田杂草及作物的化感潜力分析
DOI:10.11733/j.issn.1007-0435.2021.08.020
[本文引用: 1]
为探究圆柏(Sabina chinensis)的化感作用,本研究采用培养皿滤纸法研究圆柏叶片浸提液对地肤(Kochia scoparia)、稗草(Echinochloa crusgalli)、藜(Chenopodium album)、反枝苋(Amaranthus retroflexus)、马齿苋(Portulaca oleracea)5种杂草种子和向日葵(Helianthus annuus)、燕麦(Avena sativa)、油菜(Brassica campestris)、荞麦(Fagopyrum esculentum)4种作物萌发和生长的影响,并用圆柏叶片、树枝、树皮粉末和浸提液进行盆栽抑草效果检测。结果表明:圆柏叶片浸提液对5种杂草种子萌发和幼苗生长具有显著的抑制作用,对地肤、藜、反枝苋萌发及生长的化感效应指数均在-0.98以上;盆栽抑草结果表明,圆柏不同部位对5种杂草种子萌发和稗草及反枝苋株高生长均有较好的抑制作用,叶片化感强度大于树皮和树枝,叶片粉末拌土处理抑草效果好于浸提液叶面喷施;对作物的化感作用结果表明,圆柏叶片浸提液稀释1.5倍时,抑制荞麦种子萌发但不影响其株高及根生长,不影响燕麦种子萌发但降低其株高和根长生长,抑制油菜的发芽势和发芽指数但不影响其种子萌发率,促进油菜株高及根长生长,不影响向日葵种子萌发和生长。综上所述,圆柏具有良好的抑草活性,对作物影响较小。
苦荞提取物的化感作用及化学成分分析
DOI:10.11924/j.issn.1000-6850.casb2021-0785
[本文引用: 1]
为探究苦荞水提液的化感作用及其相关的化学成分,以2种农田恶性杂草马唐和三叶鬼针草为供试植物,测定苦荞水提液的不同有机相萃取物的化感作用,利用气相色谱-质谱联用仪(GC-MS)对苦荞水提液的石油醚相和乙酸乙酯相的萃取物进行化学成分分析。结果表明,苦荞水提液的石油醚、乙酸乙酯和正丁醇相萃取物均对马唐和三叶鬼针草的种子萌发和幼苗生长具有一定的抑制作用,其中乙酸乙酯相的化感抑制率最强,当浓度为2.00 mg/mL时,供试植物的化感响应指数为-1.00,抑制率达到100.0%,其次是石油醚相,正丁醇相的抑制率最差。总体上,3种不同萃取物对马唐的抑制作用大于三叶鬼针草,对根长抑制率大于茎长。苦荞水提液石油醚相和乙酸乙酯相中含量大于0.5%的化学成分有41种,其中石油醚相的主要成分为4-乙基苯酚,含量占26.8%,乙酸乙酯相的主要成分为四氢薰衣草醇,含量占20.7%。本研究初步证实,苦荞对农田杂草具有一定的化感作用,含有活性的化学成分,其化学成分的活性特征及作用机制有待进一步研究。
Identification of anthocyanins in the sprouts of buckwheat
DOI:10.1021/jf0704716 URL [本文引用: 1]
色谱法分析检测苦荞籽粒中的可溶性糖(醇)
通过气相色谱-质谱联用、气相色谱、高效液相色谱等手段,在苦荞籽粒中检测出了手性肌醇(DCI)、木糖醇、果糖、葡萄糖、山梨醇、肌醇、蔗糖、乙基-β-芸香糖苷等可溶性糖(醇)和两种未知化合物,苦荞籽粒各部分(壳、麸皮、外层粉、心粉)所含糖(醇)种类基本相同。活性成分DCI主要以游离状态存在,在籽粒中的质量分数分别为0.004%(壳),0.334%(麸皮),0.230%(外层粉),0.050%(心粉)和0.158%(全粉)。苦荞籽粒提取液流过强碱、强酸离子交换树脂柱后,其中的还原性糖、蔗糖及未知化合物1滞留于柱
Allelopathic potential in lettuce (Lactuca sativa L.) plants
DOI:10.1016/j.scienta.2005.04.005 URL [本文引用: 1]
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